资料摘要
蛋白质的提取和分离一、教学目标:1、通过阅读教材P64“基础知识”,掌握蛋白质分离的方法凝胶色谱法的原理、缓冲液的制备及作用和蛋白质纯度鉴定的方法电泳法的原理。2、分析教材P66“实验操作”,掌握蛋白质提取和分离的过程。3、阅读教材P69“操作提示”,掌握蛋白质分离过程中需注意的问题。二、教学重点:
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- 学校:珙县第一高级中学校
课题3 血红蛋白的提取和分离国家获奖教案
未知
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关键词:课题3 血红蛋白�…国家获奖教案
正文
蛋白质的提取和分离
一、教学目标:
1、通过阅读教材P64“基础知识”,掌握蛋白质分离的方法凝胶色谱法的原理、缓冲液的制备及作用和蛋白质纯度鉴定的方法电泳法的原理。
2、分析教材P66“实验操作”,掌握蛋白质提取和分离的过程。
3、阅读教材P69“操作提示”,掌握蛋白质分离过程中需注意的问题。
二、教学重点:
1、
掌握蛋白质分离的方法凝胶色谱法的原理、缓冲液的制备及作用和蛋白质纯度鉴定的方法电泳法的原理。
2、
掌握蛋白质分离过程中需注意的问题。
三、教学难点:
1.尝试提取和分离血液中的血红蛋白,体验提取生物大分子的基本过程和方法。
2.了解凝胶色谱法、电泳法等分离生物大分子方法的基本原理。
四、课前准备:预习教材,完成导学案上的基础知识部分
五、教学过程
1、检查导学案的完成情况
2、重难点突破:(先思考问题,再总结后对点练习)
师生共同探究完成以下任务:探究任务一:蛋白质的分离技术
(1)
蛋白质的分离技术(思考下列问题串)
A、
凝胶色谱法的原理和方法是什么?
B、
缓冲液的制备和作用是什么? C、
电泳法的原理是什么?
生物体内的蛋白质多种多样,分离蛋白质常使用的方法是凝胶色谱法和电泳法,都是根据不同蛋白质分子之间的差异来分离的。
1.凝胶色谱法
(1)分离蛋白质的过程(如图B) ①蛋白质混合物上柱。
②洗脱开始,相对分子质量较小的蛋白质扩散进入凝胶颗粒内;相对分子质量较大的蛋白质则被排阻于凝胶颗粒之外。
③相对分子质量较小的蛋白质被滞留;相对分子质量较大的蛋白质向下移动。
④相对分子质量不同的分子完全分开。
⑤相对分子质量较大的蛋白质已从层析柱中洗脱出来,相对分子质量较小的蛋白质还在行进中。
(2)凝胶色谱法的原理
直径大小
运动方式
运动路程
运动速度
洗脱次序
相对分子质量大
较大
垂直向下运动
较短
较快
先流出
相对分子质量小
较小
无规则的扩散运动
较长
较慢
后流出
2.缓冲溶液
(1)概念:在一定范围内,能够抵制外界的酸和碱对溶液pH的影响,维持pH基本不变的溶液。
(2)缓冲溶液的配制:缓冲溶液通常由1~2种缓冲剂溶解于水中配制而成。调节缓冲剂的使用比例就可以制得在不同pH范围内使用的缓冲液。
3.电泳
(1)概念:带电粒子在电场的作用下发生迁移的过程。
(2)原理:在同一电场下,由于各种分子带电性质的差异以及分子本身大小、形状的不同,使带电分子产生不同的迁移速度,从而实现样品中各种分子的分离。
(3)常用方法
①琼脂糖凝胶电泳:琼脂糖本身不带电荷,由于各种分子带电性质、分子大小和形状的不同,在电场中迁移速率不同,从而得以分离。
②聚丙烯酰胺凝胶电泳
a.SDS:使蛋白质发生完全变性,解聚成单条肽链;
b.SDS能与各种蛋白质结合形成蛋白质—SDS复合物,SDS所带负电荷的量大大超过了蛋白质原有的电荷量,因而掩盖了不同种蛋白质间的电荷差别,使电泳迁移率完全取决于分子的大小。
[总结升华] 凝胶色谱法和电泳法的比较
分离依据
分离动力
分子大小
的影响
[对点演练] 1.使用凝胶色谱法分离蛋白质实验中,相对分子质量不同的蛋白质在凝胶中的行进过程,可表示为(
) 凝胶色谱法
相对分子质量大小
重力
相对分子质量大,移动速度快
电泳
分子带电性质差异、分子大
小和形状等
电场力
分子大,阻力大,移动速度慢
2.下列关于电泳的叙述,不正确的是(
) A.电泳是指带电粒子在电场的作用下发生迁移的过程
B.带电分子会向着与其所带电荷相反的电极移动
C.蛋白质在聚丙烯酰胺凝胶中的迁移率取决于它所带净电荷的多少
D.用SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分离蛋白质,蛋白质的电泳迁移率完全取决于分子的大小
探究任务二:蛋白质提取和分离的实验操作[共研探究]
每一种蛋白质的分离纯化方法因其来源和性质不同会有很大差异,下面以哺乳动物红细胞为材料,学习初步分离血红蛋白的方法。
1.样品处理和粗分离
(1)红细胞的洗涤:采用低速短时间离心,吸出上层透明的黄色血浆,将下层暗红色的红细胞液体倒入烧杯,再加入五倍体积的生理盐水,重复洗涤三次,直至上清液中没有黄色,表明红细胞已洗涤干净。
根据上述内容,回答下列问题:
①选用哺乳动物的成熟红细胞作实验材料,因为其没有细胞核和众多细胞器,血红蛋白为有色蛋白。
②洗涤红细胞不能用蒸馏水代替生理盐水,因为生理盐水能保持红细胞的渗透压稳定。而且洗涤次数不能过少,否则无法去除血浆蛋白;离心速度过高或离心时间过长,白细胞、淋巴细胞一同沉淀。
(2)血红蛋白的释放
将洗涤好的红细胞倒入烧杯中:
①加蒸馏水到原血液的体积,其作用是使红细胞吸水涨破。
②加入40%体积的甲苯,其作用是溶解细胞膜。
③置于磁力搅拌器上充分搅拌10 min,其作用是加速红细胞破裂。
④红细胞破裂,释放出血红蛋白。
(3)分离血红蛋白溶液
①分离过程
混合液―→离心管――→溶液分层―→离心管中液体
――→
除去脂溶性沉淀层―→分10 min过滤液漏斗――→分出下层的红色透明液体(血红蛋白溶液) ②离心管中溶液分层示意图
静置2 000 r/min滤纸
(4)透析
①目的:a.除去样品中相对分子质量较小的杂质。
b.用于更换样品的缓冲液。
②原理:透析袋能使小分子自由进出,而将大分子保留在袋内。
③过程:取1 mL的血红蛋白溶液装入透析袋中,将透析袋放入盛有300 mL的物质的量浓度为20 mmol/L的磷酸缓冲液中(pH为7.0),透析12 h。
2.凝胶色谱操作
(1)凝胶色谱柱的制作
①取长40 cm,内径1.6 cm的玻璃管,两端需用砂纸磨平。
②柱底部制作:选择适合的橡皮塞→橡皮塞打孔→挖出凹穴→安装移液管头部→覆盖尼龙网,再用100目尼龙纱将橡皮塞上部包好。
③柱顶部制作:打孔→安装玻璃管。
④将上述三部分按相应位置组装成一个整体。
(2)凝胶色谱柱的装填
计算:根据色谱柱的内体积计算所需凝胶量
↓
凝胶溶胀:凝胶用蒸馏水充分溶胀后,配成凝胶悬浮液
↓
固定:将色谱柱垂直固定在支架上
↓
装填:将凝胶悬液一次性装填入色谱柱内
↓
洗涤平衡:用20 mmol/L的磷酸缓冲液(pH=7.0)洗涤平衡凝胶12 h,使凝胶装填紧密
(3)样品的加入和洗脱
打开流出口,使缓冲液与凝胶面平齐,关闭出口
↓
用吸管将
1_mL样品加到色谱柱顶端,打开出口,使样品进入凝胶层后,关闭出口
↓
小心加入物质的量浓度为
20_mmol/L的磷酸缓冲液到适当高度后,连接缓冲液洗脱瓶,打开下端出口,开始洗脱
↓
待红色的蛋白质接近色谱柱底端时,用试管收集流出液,每
5_mL收集一管,连续收集
3.纯度鉴定
判断纯化的蛋白质是否达到要求,需要进行蛋白质纯度的鉴定。鉴定的方法中,使用最多的是SDS—聚丙烯酰胺凝胶电泳。
[总结升华] 1.血液样品处理后发生的变化
(1)正常现象:由于血红蛋白与氧气结合呈鲜红色,与二氧化碳结合呈暗红色,所以刚分离的血红蛋白溶液呈红色。
(2)分层不明显的原因:洗涤次数少,未完全除去血浆蛋白。
(3)红细胞不纯净的原因:离心速度过高或离心时间过长,使白细胞和淋巴细胞一同沉淀。
2.判断装填的凝胶色谱柱是否成功
(1)判断方法:
①在凝胶柱旁放一支与凝胶柱垂直的日光灯,检查凝胶是否装填均匀。
②加入大分子的有色物质,观察色带移动情况。
(2)成功的标准及调整:
①判断标准:若色带均匀、狭窄、平整,说明性能良好。
②调整方法:若色谱柱内出现纹路,可轻轻敲打柱体以消除,若消除不了则重新装柱。
③色谱柱内不能有气泡存在,一旦发现有气泡,必须重装。
3.血红蛋白分离效果的判断
(1)若血红蛋白的红色区带均匀、狭窄、平整地随洗脱液缓慢流出,则装填成功,分离操作正确。
(2)若血红蛋白的红色区带歪曲、散乱、变宽,则说明分离效果不好,装填不成功。
【易错易混】总结
(1)凝胶色谱柱的直径不宜过大,直径过大,易造成洗脱液体积增大,样品的稀释浓度过大。
(2)在装填凝胶色谱柱时,要注意不得有气泡存在,气泡会搅乱洗脱液中蛋白质的洗脱次序,降低分离效果;同时在凝胶色谱操作中,不能发生洗脱液流干,露出凝胶颗粒的现象。一旦发生以上现象,凝胶色谱柱必须重新装填。
(3)洗脱液的流速是影响分离效果的重要因素之一,洗脱液应维持流速的恒定,即维持洗脱液加在色谱柱上的压力恒定。
[对点演练] 3.下列说法不正确的是(
) A.在一定范围内,缓冲溶液能够抵制外界的酸和碱对溶液pH的影响,维持pH基本不变
B.缓冲溶液通常由1~2种缓冲剂溶解于水中配制而成
C.电泳是指带电粒子在电场的作用下发生迁移的过程
D.透析袋能使大分子自由进出,而将小分子保留在袋内
3、课后小结(师生引导学生总结)
4、典例练习(完成导学案后面的练习)
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